枸杞多糖对高糖环境下HRCEC增殖及VEGF表达的影响

来源:期刊VIP网所属分类:检验医学发布时间:2021-02-06浏览:

  〔摘要〕 目的 观察不同浓度的枸杞多糖(lycium barbarum polysaccharide, LBP)对体外高糖环境下培养的人视网膜血管内皮细胞(human retinal capillary endothelial cells, HRCEC)增殖及血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)表达的影响。方法 获取人眼球摘除术后的HRCEC,予以体外培养,选取最佳状态的3~4代细胞;CCK8法检测在不同浓度LBP体外高糖环境下分别作用12、24、36 h后HRCEC的增殖情况;Western blot法检测各组HRCEC的VEGF表达情况。结果 同一时间组间比较,高糖组HRCEC活性及VEGF的表达量均高于低糖组(P<0.05);不同浓度LBP实验组HRCEC活性及VEGF表达量均明显低于高糖组(P<0.05),80 μg/mL LBP组HRCEC活性及VEGF表达低于20 μg/mL LBP实验组与40 μg/mL LBP实验组(P<0.05);各实验组在干预36 h时, HRCEC活性及VEGF表达低于干预12 h与24 h(P<0.05)。结论 LBP能抑制高糖环境下HRCEC的增殖并下调VEGF的表达,并与LBP浓度和作用时间正相关。

  〔关键词〕 枸杞多糖;人视网膜血管内皮细胞;血管内皮生长因子;高糖;新生血管

医药论文发表

  糖尿病視网膜病变(diabetic retinopathy, DR)发病率逐渐升高,世界范围内的糖尿病患者中,DR患病率约34%[1],DR早期症状隐匿,极易导致失明[2]。DR发生的主要原因是视网膜缺血缺氧,血管内皮细胞增殖,VEGF高表达,最终视网膜新生血管(retinal neovascularization, RNV)形成,DR的主要并发症是视网膜出血与黄斑水肿(diabetic macular edema, DME)。玻璃体腔注射抗VEGF药物虽然是DR并发黄斑水肿的一线治疗方法[3],但抗VEGF药物(雷珠单抗、贝伐单抗、阿柏西普、康柏西普等)价格昂贵、作用时间短[4]。寻求价格低廉、安全有效的抗VEGF药物成为目前DR研究的热点。枸杞多糖(lycium barbarum polysaccharide, LBP)是一种天然水溶性多糖,药理作用广泛。LBP可以降低DM小鼠的视网膜炎症反应、氧化应激反应及血管新生[5],LBP还可以抑制VEGF、Ang及其受体在DM小鼠视网膜中的表达,具有治疗DR的作用。既往虽然较多关于LBP在糖尿病、血管内皮细胞等方面的研究,但尚未发现在人视网膜血管内皮细胞(human retinal capillary endothelial cells, HRCEC)的相关研究,本文基于LBP对小鼠糖尿病VEGF抑制作用的基础上,研究了LBP对高糖环境下HRCEC及VEGF的影响,期望为研发防治DR新药物提供基础研究。

  1 材料与方法

  1.1 实验材料

  1.1.1 主要试剂 胎牛血清(Gibco公司,货号04-001-1ACS);LBP(陜西康盛生物技术有限公司,KS118,纯度35%);兔抗人VEGF 抗体(博奥森公司,货号bs-0279R);β-actin(Mouse)、HRP goat anti-mouse IgG、HRP goat anti-rabbit IgG(美国proteintech公司,货号依次为:66009-1-Ig、SA00001-1、SA00001-2);高糖培养基(SIGMA公司,货号D5796);蛋白预染Marker(Thermo公司);SuperECL Plus超敏发光液(美国Advansta公司,货号K-12045-D50);胰酶消化液、RIPA裂解液(中国上海碧云天生物有限公司,货号C0201、P0013B);显影液、定影液(中国上海佳信公司,BW-61、BW-62);蛋白裂解液(中国上海碧云天公司,货号P0013B);TEMED(中国上海阿拉丁公司,T105497);SDS(中国大连美伦公司,货号MB2479);第Ⅷ因子相关抗原抗体(Abcam公司)。

  1.1.2 LBP溶液的配制 LBP母液配置:称取35%含量LBP 10 mg,加入10 mL DMEM高糖培养基稀释,摇匀、溶解,500 r/min离心5 min,双层0.22 μm微孔滤膜过滤细菌及沉淀,并密封分装,4 ℃保存。此时母液配置完成,含量为1 mg/mL。配置实验LBP浓度,移取母液200 μL置于15 mL离心管中,加入DMEM高糖培养基至10 mL,反复摇匀,配置成20 ?滋g/mL LBP,做好标记,置于4 ℃冰箱保存。

  1.2 实验方法

  1.2.1 HRCEC的培养 在南华大学第二附属医院手术室选取角膜移植手术后余下的眼球,庆大霉素注射液浸泡30 min,分离视网膜神经上皮层,常温下2%胰蛋白酶消化,过滤,加入20%小牛血清培养液停止消化,1 200 r/min离心8 min,去除上清液,在离心管内加入10% Gibico FBS+1%双抗的DMEM培养基吹打混匀,接种于含有10% Gibico FBS+1%双抗的DMEM培养基,再置入37 ℃、5% CO2培养箱培养。待细胞铺满整个培养皿底部约80%时进行传代。

  1.2.2 HRCEC鉴定 (1)细胞爬片;(2)固定:PBST洗涕,加入4%PFA(多聚甲醛),4 ℃细胞培养箱30 min固定;(3)按照Western blot实验步骤进行破膜封闭、一抗孵育、二抗孵育;(4)包埋:抽取已二抗孵育好的细胞爬片,PBST缓冲液清洗,滴取1滴Fluoromount-G后盖玻片再盖上;(5)阳性染色镜检示:经过山羊抗小鼠IgG二抗橙红色DyLight594荧光标记。显微镜下观察并采集图像。

  1.2.3 实验分组 取对数生长的细胞进行分组:(1)AL组:低糖对照组(低糖+细胞);(2)AG组:高糖对照组(高糖+细胞);(3)A1组:20 μg/mL LBP实验组;(4)A2组:40 μg/mL LBP实验组;(5)A3组:80 μg/mL LBP实验组。其中低糖浓度为1 g/L,高糖浓度为4.5 g/L;实验组为不同浓度LBP+高糖培养基+细胞。

  1.2.4 CCK8法行细胞增殖活性的检测 取对数生长期的细胞,消化计数,以5×103个细胞/孔密度接种于96孔板内,每孔100 μL。各组均设5个复孔,培养贴壁,每孔加入10 μL/孔的CCK8,用完全培养基配置CCK8溶液,去除含药培养基每孔加入100 μL含有CCK8的培养基。37 ℃,5% CO2继续孵育4 h后于Bio-Tek酶标仪测定450 nm处吸光度(OD)值,测定各组HRCEC的增殖活性。

  增殖抑制率=(高糖对照组OD值-药物干预组OD值)/高糖对照组OD值×100%

  1.2.5 Western blot 蛋白检测 (1)PBS洗涤细胞,3 000 r/min离心2 min,加入120 μL RIPA裂解液,超声破碎1.5 min;冰上裂解;4 ℃,12 000 r/min离心15 min;取上清液。按照BCA法,测定550nm之间波长的吸光值,根据标准曲线计算蛋白浓度。(2)样品准备:取80 μL蛋白上清,加入20 μL 5*loading buffer混匀,沸水煮5 min,放入冰盒中速冷备用。(3)电泳:点入marker 2 μL,其它按照分组顺序每孔上样15 μL已变性蛋白。恒定电压75 V,130 min。(4)转膜:分别切胶VEGF(24kD),β-actin(42kD);300 mA恒定电流转膜,VEGF约39 min,β-actin 约60 min。(5)封闭:用1*PBST配制5%脱脂奶粉,室温封闭60 min,4 ℃过夜,次日室温放置30 min。(6)一抗孵育:加入一抗(Rabbit Anti-VEGF antibody (bs-0279R),1∶1 000;Mouse anti-β-actin antibody(66009-1-Ig)1∶5 000,室温孵育90 min;1*PBST洗3次,每次15min。(7)二抗孵育:加入二抗(HRPgoatanti-mouse IgG,SA00001-1,1∶5 000;HRPgoat anti-rabbit IgG,SA00001-2,1∶6 000)温孵育90 min后1*PBST洗3次,每次10 min。(8)显色/曝光:化学发光法(chemiluminescence, ECL)显色曝光,显影冲洗,Image lab软件分析灰度值。

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